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Ácido fítico o fitato y remojo o germinación

El ácido fítico y el fitato pueden reducirse mediante remojo, germinación o fermentación. Las fitasas presentes en los alimentos permiten su descomposición dura

Avena, frijoles, semillas de lino dorado, semillas de calabaza y almendras crudos en 5 tazones.© CC-by 2.0, Kristina Fürst, Stiftung Gesundheit und Ernährung Schweiz

Las legumbres se remojan en agua antes de cocinarlas. ¿Cuál es exactamente el propósito del remojo? ¿Y qué ocurre con los frutos secos y los cereales integrales? ¿Existen alternativas al remojo, como la germinación?

Conclusión

El ácido fítico es un componente natural de los alimentos saludables. Con una dieta equilibrada, el ácido fítico rara vez representa un problema. El remojo es un tratamiento previo útil para granos, legumbres y semillas, especialmente antes de germinar, cocinar o fermentar. Tiene poco efecto sobre los frutos secos. En las legumbres, el remojo no solo reduce el ácido fítico, sino que también disuelve los azúcares complejos que producen gases, mejorando así su digestibilidad. El ácido fítico también posee propiedades beneficiosas para la salud, incluyendo efectos antioxidantes y antiinflamatorios.

1. ¿Qué es el ácido fítico?

El ácido fítico actúa como reserva de fosfato y minerales para la germinación de las plantas. Como antioxidante, protege las reservas de nutrientes de la semilla de la degradación oxidativa. Se encuentra principalmente en las capas externas de los cereales integrales, los frutos secos y las semillas, así como en las legumbres. Es probable que el ácido fítico también desempeñe un papel disuasorio sobre depredadores como insectos y otros herbívoros.

El ácido fítico se clasifica a menudo como un compuesto vegetal secundario debido a sus efectos beneficiosos para la salud. Diversas investigaciones han demostrado propiedades antioxidantes, antimicrobianas, antidiabéticas, neuroprotectoras, osteoprotectoras, antiinflamatorias y anticancerígenas del ácido fítico.23,24,25

El ácido fítico posee propiedades complejantes y se une a los minerales ingeridos con los alimentos, especialmente al hierro, zinc, calcio y magnesio, en el estómago y los intestinos. Estos minerales quedan entonces en forma insoluble y dejan de estar fácilmente disponibles para el organismo. La biodisponibilidad de estos minerales se reduce. Debido a que también afecta la actividad de las enzimas digestivas de proteínas y, por lo tanto, el proceso digestivo, a veces se clasifica, según los criterios, como un inhibidor de proteasas. Por consiguiente, el ácido fítico también se denomina antinutriente.

Este efecto negativo del ácido fítico suele exagerarse. Aunque los humanos carecemos de la enzima endofitasa, necesaria para su descomposición, las bacterias intestinales pueden degradar parcialmente el ácido fítico en el tracto digestivo. El contenido de fitasa en los alimentos (por ejemplo, en cereales o harina) determina significativamente la actividad de la fitasa. Las deficiencias minerales causadas por la ingesta de fitatos solo se producen con grandes cantidades de alimentos crudos y sin procesar.24

El fitato es la forma ionizada del ácido fítico después de que este haya liberado sus iones H+. En el organismo o en los alimentos, es decir, a pH fisiológico, el ácido fítico casi siempre existe como fitato. Los términos "fitato" y "ácido fítico" se utilizan a menudo como sinónimos. El término "fitina" describe la sal de calcio y magnesio del ácido fítico, que se encuentra en las plantas.24

Función del ácido fítico en la planta

El ácido fítico es un anillo de inositol (inositol = alcohol de azúcar) con 6 grupos fosfato (IP6). Este ácido es una sustancia completamente natural que sirve como medio de almacenamiento de fosfato, minerales y oligoelementos para las plantas. Debido a su carga negativa, siempre se encuentra unido a cationes (zinc, hierro, magnesio, calcio).24

La estructura bidimensional del ácido fítico (IP6, fitato) se parece al volante de un barco.© Public Domain, Harbinary, Wikipedia

Cuando la semilla recibe suficiente calor y agua, la vida despierta en su interior. Tan pronto como comienza el proceso de germinación, la semilla produce la enzima fitasa. La fitasa descompone el ácido fítico en un compuesto similar al azúcar y fosfato, inactivándolo y liberando así el fosfato almacenado. Este fosfato queda entonces disponible para la plántula como un nutriente esencial para su crecimiento y desarrollo.

2. Efectos en el cuerpo humano

El ácido fítico se une a minerales y oligoelementos. Estos complejos resultan no disponibles o menos disponibles para el organismo. Esto afecta particularmente a los minerales que existen en formas divalentes o trivalentes, como el calcio, el zinc, el hierro, el magnesio y el manganeso. El hierro y el zinc parecen formar más complejos que el calcio y el magnesio. El ácido fítico inhibe significativamente la absorción de hierro, especialmente en lactantes, pero también en adultos. Una reducción del 90 % en el ácido fítico duplica la absorción de hierro. En adultos, se ha demostrado una inhibición de la absorción de zinc, pero esto no está claro en lactantes y niños pequeños. Además de los iones metálicos, el ácido fítico también forma complejos con las proteínas de los alimentos. La digestibilidad disminuye. Asimismo, esta sustancia tiene un efecto inhibidor sobre las enzimas que desempeñan un papel fundamental en la degradación de las proteínas en el intestino delgado y el estómago.23,24,25

En poblaciones que sufren desnutrición relacionada con enfermedades o en países en desarrollo con dietas ricas en ácido fítico, esta unión de nutrientes suele ser un problema.2,7

El organismo presenta respuestas adaptativas a la ingesta elevada y regular de fitatos, como un aumento de las proteínas transportadoras en el intestino. El impacto en la absorción efectiva de minerales sigue siendo difícil de evaluar debido a la falta de estudios concluyentes. La adaptación depende de si existe una deficiencia y del contenido nutricional general de la dieta. En concreto, los estudios muestran un aumento en las tasas de absorción de zinc con una dieta baja en zinc y fitatos. Sin embargo, una dieta rica en fitatos no mejoró la absorción de hierro ni de zinc.9 Estudios posteriores (2015) demuestran que la absorción de hierro aumenta con niveles bajos de hierro en sangre y una alta ingesta de fitatos. Sin embargo, las reservas de hierro en sangre no mostraron cambios medibles después de ocho semanas.31

Sin embargo, el ácido fítico rara vez supone un problema con una dieta equilibrada.

La mayoría de las personas en los países industrializados no sufren deficiencias minerales causadas principalmente por el ácido fítico. Esto se debe a que sus dietas son variadas y el ácido fítico solo afecta una parte de la biodisponibilidad de los minerales.

No es posible responder categóricamente si el mayor contenido mineral de los productos integrales compensa el efecto inhibidor del ácido fítico, y se requiere un análisis diferenciado. Sin embargo, en los países occidentales, un mayor consumo de cereales integrales se asocia con mejores resultados de salud.31

Incluso tras eliminar el ácido fítico, sigue siendo difícil predecir con exactitud cuántos minerales absorbe finalmente el organismo. Las investigaciones actuales son insuficientes para determinarlo.

La combinación de alimentos desempeña un papel importante. Por ejemplo, algunos estudios han eliminado industrialmente los fitatos de las papillas de cereales para niños y luego han examinado la absorción de hierro. Mezclarlas con leche, como se recomienda en el envase, no mejoró la absorción de hierro. Sin embargo, mezclarlas con agua sí mejoró significativamente la absorción de hierro.9,11

Propiedades positivas del ácido fítico

  • El ácido fítico posee propiedades antioxidantes y anticancerígenas: se cree que la quelación con el hierro es responsable de este efecto positivo. Esta unión previene la oxidación del hierro, lo que reduce el riesgo de cáncer de colon. El ácido fítico también parece tener efectos positivos en el cáncer de próstata, mama y páncreas.3,4 Asimismo, existen evidencias de que el fitato y el inositol reducen los efectos secundarios durante la quimioterapia.24
  • Existen evidencias de que las dietas ricas en fitatos ayudan a prevenir la arteriosclerosis y a reducir el riesgo cardiovascular.24
  • Los estudios clínicos demuestran que el fitato puede disminuir el riesgo de cálculos renales y reducir la cantidad de calcio en la orina. También inhibe la formación de sarro.24
  • La suplementación dirigida con Ca-Mg-IP6 puede ralentizar la pérdida ósea en la osteoporosis.24
  • Los estudios epidemiológicos asocian una dieta rica en fitatos con un deterioro cognitivo más lento y un mejor rendimiento cognitivo en diversos grupos de edad.24
  • Los estudios indican que una dieta rica en alimentos de origen vegetal, como frutos secos, legumbres y cereales integrales, mejoró los niveles de azúcar en sangre y otros marcadores metabólicos (HbA1c, adiponectina) en pacientes con diabetes y enfermedades cardiovasculares.24
Esto no es solo para veganos o vegetarianos:
Los veganos a menudo comen de forma poco saludable. Errores nutricionales evitables
.

3. Presencia de ácido fítico en los alimentos

El ácido fítico se encuentra en los cereales integrales (como el maíz, el trigo, la cebada y el centeno), las legumbres (como la soja), las semillas oleaginosas (como las semillas de lino o de calabaza) y los frutos secos. Su ubicación varía entre las plantas. En las legumbres, el ácido fítico se localiza principalmente en el cuerpo proteico del endospermo. En los cereales (trigo, centeno, cebada, arroz), se encuentra en la capa de aleurona y el salvado; en el maíz, también es abundante en el germen. Los pseudocereales y las semillas oleaginosas almacenan el ácido fítico principalmente en los tejidos de almacenamiento del germen y los cotiledones.

Se encuentran niveles particularmente altos de ácido fítico (o su anión fitato) en el salvado de arroz y trigo, el germen de maíz, la linaza y las semillas de girasol. Los frutos secos también pueden presentar niveles bastante elevados. En general, los niveles en las legumbres varían de forma similar a los de los cereales y pseudocereales.

Dado que ni la harina blanca ni el arroz blanco contienen salvado, su contenido de ácido fítico es relativamente bajo. El arroz blanco, en cambio, contiene entre 0,06 y 1,08 g/100 g. Sin embargo, además del ácido fítico, los productos elaborados con harina blanca y arroz blanco carecen de compuestos vegetales secundarios, fibra y minerales.

Cabe destacar que la cantidad de ácido fítico en los alimentos depende del tipo de planta, las condiciones climáticas de su crecimiento, la calidad del suelo y, especialmente, el uso de fertilizantes fosfatados. Los valores también varían según el método analítico empleado. Asimismo, se producen diferencias debido a que, además del ácido fítico propiamente dicho con seis grupos fosfato, se incluyen en la medición derivados con un número reducido de fosfatos.

Contenido de ácido fítico en cereales, legumbres, frutos secos y semillas (g/100g)10,30

Comestibles

mínimo

máximo

Arroz integral

0,84

0,99

arroz blanco

0,06

1,08

salvado de arroz

2,56

8,7

Trigo

0,39

1,35

salvado de trigo

2,10

7,3

Avena

0,42

1,16

maíz

0,72

2,22

germen de maíz

6,39

-

centeno

0,54

1,46

mijo de sorgo

0,57

3,35

mijo

0,18

1,67

Quinoa 12

1,03

1,22

Soja

1,00

2,22

frijoles rojos

0,61

2,38

garbanzos

0,28

1,60

lentes

0,27

1,51

miseria

0,17

4,47

almendras

0,35

9,42

Nueces

0,20

6,69

Anacardos

0,19

4,98

nueces de Brasil

0,29

6,34

Pistachos

0,29

2,83

Avellanas

0,23

0,92

linaza

2,15

3,69

nueces de macadamia

0,15

2,62

semillas de chía

0,96

1,16

sésamo

1,44

5,36

harina de girasol

3,9

4,3

4. Cómo reducir el ácido fítico

La enzima fitasa se activa durante el remojo, la germinación, la fermentación (producción de masa madre o fermentación láctica) y la digestión.7

Además, la eliminación de la capa de aleurona del grano mediante el descascarillado y la molienda reduce significativamente el contenido de ácido fítico (¡pero también el contenido mineral!).25

4.1 Degradación durante el remojo y la germinación

El remojo y la germinación, combinados con calor, agua y luz, activan procesos metabólicos en la semilla que provocan la conversión enzimática o la descomposición de diversas sustancias. Tras la germinación, disponemos de más nutrientes. La fitasa activada, presente de forma natural en el grano, descompone enzimáticamente el ácido fítico.30

No se debe reutilizar el agua de remojo, ya que contiene ácido fítico disuelto.

La degradación del ácido fítico produce derivados del ácido fítico con un número variable de grupos fosfato unidos. El ácido fítico en sí tiene seis grupos fosfato. El anillo de inositol no pierde todos sus grupos fosfato a la vez; en cambio, se desprenden individualmente y de forma gradual. Los fosfatos de inositol aislados con menos de cinco grupos fosfato (IP1 a IP4) no inhiben significativamente la absorción de hierro. Esto es cierto para el zinc, al menos para el IP4. Sin embargo, en los alimentos procesados, el IP3 y el IP4, en combinación con el IP5/IP6, pueden contribuir a la inhibición de la absorción de hierro.6,29

El objetivo es, por lo tanto, lograr la mayor actividad fitasa posible. La industria suele añadir fitasas aisladas de bacterias (Bacillus spp.) o hongos (Aspergillus spp.) para acelerar la degradación. Existen diferencias en la termoestabilidad y la optimización del pH según la forma y el origen de la fitasa.

En casa, puedes aprovechar la actividad de la fitasa que varía en las plantas combinando alimentos con baja actividad con aquellos que sí la tienen. El centeno, el trigo, la cebada y el trigo sarraceno tienen una actividad de fitasa relativamente alta. Los garbanzos, el maíz, el arroz, el mijo , la avena y la soja tienen una baja actividad de fitasa. Quienes toleran el gluten pueden simplemente añadir centeno, trigo o cebada. Quienes no toleran el gluten pueden usar el trigo sarraceno como "acelerador".

En un estudio realizado en condiciones de laboratorio, se utilizaron arroz pulido (30 %) y garbanzos (60 %), mientras que el trigo sarraceno (10 %) sirvió como acelerador de la fitasa. Después de 200 minutos, el ácido fítico se degradó completamente cuando se remojó con trigo sarraceno, mientras que sin trigo sarraceno, la cantidad de ácido fítico restante después de 200 minutos fue la misma que después de 120 minutos con trigo sarraceno.8 La adición de alimentos con actividad fitasa puede reducir el tiempo de degradación del ácido fítico.

Precaución: Los métodos de calentamiento en seco, como asar o hornear, solo destruyen entre el 5 % y el 15 % del contenido de fitato. El ácido fítico es termoestable a temperaturas típicas de cocina. Sin embargo, la enzima fitasa, fundamental para el tratamiento, se reduce significativamente.

El calor destruye la enzima fitasa, la cual descompone el ácido fítico. La industria alimentaria casi siempre trata la avena y los copos de avena con calor seco. Este proceso se denomina "horneado" y no se indica en la etiqueta del producto. Opte por avena integral orgánica germinable o avena germinada y prepárela usted mismo en copos de avena. Si tiene deficiencia de calcio, zinc, hierro, magnesio o manganeso, puede remojar la avena en agua durante la noche. Deseche el agua de remojo a la mañana siguiente y procese los copos de avena como desee.

EE: Con Erb-Muesli, tengo décadas de experiencia diaria con un breve tiempo de remojo para una combinación de semillas y copos de avena recién molidos, que también muelo a diario. Este tiempo de remojo es solo el tiempo de preparación hasta que empiezas a comer. Puede que haya ventajas en dejar reposar el muesli un rato antes de comerlo, pero nunca las he necesitado. Consulta mi "estado" a los 80 u 83 anos

Para quienes aún deseen germinar avena integral: En condiciones óptimas, el malteado de la avena reduce el contenido de fitato en un 98 %. Dado que la avena tiene una baja actividad fitasa, se puede complementar con trigo o cebada germinados.18

El remojo descompone algunos de los carbohidratos difíciles de digerir (como el polisacárido rafinosa y los azúcares de la familia de la rafinosa, estaquiosa y verbascosa), que se encuentran principalmente en las legumbres, pero también en el trigo y el centeno.23

El intestino delgado solo puede hidrolizar y absorber la rafinosa en una medida limitada. La rafinosa se compone de fructosa, glucosa y galactosa. Los humanos generalmente no tienen problemas para digerir la fructosa y la glucosa. Sin embargo, carecemos de las enzimas necesarias para digerir la galactosa. Como resultado, una cantidad significativa llega al intestino grueso. Allí, los microorganismos anaeróbicos fermentan la galactosa y producen gas, lo que causa flatulencia. Dado que el agua de remojo contiene algo de rafinosa, no debe utilizarse.23

Fórmula estructural de ácido fítico (ácido fítico o éster de ácido hexafosfórico de mio-inositol.© Public Domain, Yikrazuul, Wikipedia
La estructura del ácido fítico, representada mediante una fórmula simple de cuñas y guiones.
4.2 Degradación por fermentación

Los microorganismos implicados en la fermentación, o fermentación láctica, poseen la enzima fitasa. Durante la fermentación, esta enzima descompone el ácido fítico. Las condiciones óptimas para la actividad enzimática son un pH de 4,5 y temperaturas entre 45 y 55 °C. Este valor de pH se alcanza, por ejemplo, al preparar masa con masa madre. En los cereales, la fermentación mejora la biodisponibilidad de los minerales.

En condiciones óptimas (tierra, semillas germinadas; pH, temperatura, tiempo), la fermentación puede reducir el ácido fítico hasta en un 90 %. Aquí también, una cantidad suficiente de fitasa es un requisito previo para una fermentación eficiente. Los granos con bajo contenido de fitasa, como el maíz, el arroz, la avena y el mijo, requieren tiempos de fermentación más prolongados o suplementación con granos ricos en fitasa. Además, los taninos, los oxalatos y los carbohidratos, que forman complejos con las proteínas y restringen aún más la digestibilidad, también se descomponen.

En muchas culturas tradicionales se encuentran platos elaborados con granos fermentados, así como con semillas, frutos secos y legumbres, combinados con métodos como el remojo (y posterior fermentación) o la germinación (y el tostado).19,20 Estos métodos naturales buscan aumentar tanto la digestibilidad como el valor nutricional de estos alimentos.10 Algunos ejemplos de estos platos fermentados son: Kishk (de Arabia), Banku (de Ghana), Mawe (mijo marrón de África), Injera (de Etiopía), Ogi (una papilla de África Occidental hecha de maíz o mijo), Chicha o Masa (maíz de Sudamérica) y Nshima (harina de maíz de África Central y Meridional).32

4.3 Descomposición mediante digestión

Los rumiantes poseen enzimas degradadoras de fitatos. Los animales monogástricos, incluidos los humanos, requieren fitasas suplementarias (provenientes de los alimentos o de preparaciones específicas) para que el organismo pueda descomponer el ácido fítico en el tracto gastrointestinal. Cuando las fitasas activadas están presentes en los alimentos (por ejemplo, mediante fermentación o alimentos crudos), el organismo puede descomponer los fitatos a una tasa del 36-63 %. La fitasa inactivada por calentamiento u otros procesos reduce la descomposición de los fitatos en el tracto gastrointestinal al 0-28 %.10,23

4.4 Degradación por cocción

El ácido fítico es termoestable, por lo que no se produce degradación durante la cocción. El calor en la fase inicial de la cocción reduce parte del ácido fítico al disolverse en el agua. La cocción prolongada inactiva las enzimas endógenas (fitasa). Sin embargo, la cocción favorece la degradación de lectinas y saponinas.25,30

Los tiempos de cocción varían considerablemente según la variedad: de 30 a 180 minutos, aunque las lentejas rojas y amarillas solo requieren 15 minutos. Los cereales y las legumbres deben hervirse brevemente y luego cocinarse a fuego lento. Los cereales se consideran suficientemente cocidos cuando están blandos al morderlos. Las legumbres requieren tiempos de cocción prolongados (especialmente las alubias rojas y los garbanzos) para inactivar por completo los antinutrientes termolábiles, como las lectinas y los inhibidores de la tripsina.

5. Esta es la cantidad de ácido fítico que se puede reducir.

La cantidad de ácido fítico reducido depende del tipo de alimento (grano, legumbre, semilla, etc.), la actividad de la fitasa, el contenido de ácido fítico, los métodos de procesamiento (remojo, germinación, fermentación, cocción) y condiciones como el pH, la humedad, la temperatura y el tiempo. Cabe destacar que las reducciones mencionadas se logran principalmente en condiciones ideales, generalmente en un laboratorio.

5.1 Legumbres

En el caso de las legumbres, el remojo (a aproximadamente 50 °C) puede ser un pretratamiento valioso para activar las fitasas endógenas. En los garbanzos, el contenido de ácido fítico disminuyó entre un 47 y un 55 % al aumentar el tiempo de remojo de 2 a 12 horas.25,30 Sin embargo, no todos los estudios confirman este efecto.29

Cocinar después del remojo es más eficaz para reducir el ácido fítico en las legumbres. Dado que el ácido fítico es soluble en agua, siempre se debe desechar el agua de remojo y cocción. La germinación previa aumenta aún más la actividad de degradación del fitato en las legumbres.25,30

5.2 Cereales y pseudocereales

El remojo por sí solo durante un corto período tiene un efecto menor en la reducción del ácido fítico en los granos que la combinación de remojo y cocción. En condiciones de laboratorio, el remojo de la harina de sorgo durante 24 horas reduce el ácido fítico entre un 16 % y un 21 % y aumenta la solubilidad del hierro y el zinc en el mijo perla entre un 2 % y un 23 %.25,30

El remojo y la germinación (durante 7 días) de la quinua reducen su contenido de ácido fítico entre un 20 y casi un 80 %, según la variedad.12 Otras fuentes muestran una reducción de hasta un 45 %, especialmente cuando el mijo se maltea. El malteado describe el proceso de remojo, germinación y posterior detención de la germinación mediante el secado a temperaturas más elevadas.30

Para el arroz integral, que tiene un alto contenido de ácido fítico, el efecto de la fermentación es más efectivo (56-96 %). Simplemente remojar los granos de arroz enteros durante 24 horas a 25 °C tuvo el menor efecto (efecto < 20 %).

5.3 Nueces

Remojar los granos y las legumbres ayuda a reducir el contenido de fitatos. Esta práctica se utiliza con frecuencia y éxito en países de bajos ingresos. Sin embargo, el remojo y el secado posterior tienen el efecto contrario en los frutos secos. Un estudio observó una reducción significativa tras el remojo únicamente en las nueces, lo que se atribuye a la difusión pasiva.13

El ácido fítico presente en los frutos secos inhibe significativamente la absorción de hierro.13 El consumo de grandes cantidades de frutos secos —como usar harina de almendras en lugar de harina convencional para hornear o comer mantequilla de cacahuete a diario— puede provocar una ingesta elevada de ácido fítico.

Aunque los frutos secos contienen hierro, este permanece unido a fitatos y, por lo tanto, su biodisponibilidad es baja. Los frutos secos tienen poca fitasa activa. El remojo apenas reduce el contenido de ácido fítico. En el caso de frutos secos triturados y remojados, se produce una mayor pérdida de minerales debido a que se lixivian más minerales en el agua.13

Una excepción es el coco, que, sin embargo, no es un fruto seco sino una drupa. Contiene poco o ningún ácido fítico. Durante siglos, el coco se ha considerado un alimento tradicional crudo, consumido por la gente de sus países de origen sin ningún procesamiento. Sin embargo, tiene una proporción muy baja de ácidos grasos omega-6 a omega-3 y contiene demasiados ácidos grasos saturados (véase aceite de coco).14

El ácido ascórbico puede mejorar significativamente la absorción de minerales (especialmente hierro) a pesar de la presencia de ácido fítico.11,14

Incorpore alimentos ricos en vitamina C, como jugo de naranja o limón, a una comida rica en cereales o frutos secos. Estudios en animales demuestran que los ácidos orgánicos (por ejemplo, el ácido cítrico) presentes en alimentos que contienen fitasa ayudan a aumentar la actividad de esta enzima y la eficacia de la degradación del ácido fítico. Disminuyen el pH y pueden actuar como quelantes competitivos de iones metálicos.33

6. Pautas para el remojo y la germinación

El tiempo de remojo y germinación varía según la legumbre o el grano. El método más sencillo es dejarlos en remojo toda la noche con el doble de agua.

La tabla a continuación contiene algunas pautas sobre los tiempos de remojo y germinación. Estos tiempos se aplican tanto a la germinación como al consumo inmediato o la cocción. Las semillas también pueden ahogarse y morir. Por lo tanto, en caso de duda, utilice el tiempo más corto de nuestra tabla para la germinación; el tiempo más largo si desea consumirlas de inmediato.

6.1 De la germinación a la brotación de las verduras

Brotes que ya tienen unos centímetros de largo y muestran los primeros folletos.© CC0, Stux, Pixabay

Básicamente, se distingue entre semillas germinadas (1), plántulas (2), brotes (3) y hojas de brote (4). Una plántula es la planta joven que se desarrolla a partir del embrión contenido en la semilla. Esto incluye la raíz (radícula) y la primera yema del brote en germinación, la plúmula. Sin embargo, en sentido estricto, el término "brote" solo abarca las partes aéreas, es decir, tallos y hojas. Los brotes a menudo aún no presentan coloración verde porque los cotiledones todavía no producen clorofila en esta etapa.

Una vez germinada, generalmente después de 24 horas, la semilla libera sus nutrientes vitales (por ejemplo, ácido cítrico, ácido málico, etc.) y rompe la cubierta seminal. La plántula (2) tiene aproximadamente 1 mm de tamaño, un verdadero "producto vital" o superalimento. Esta plántula brota (crece) en un ambiente húmedo (cálido, a veces oscuro) y desarrolla brotes (3) y luego hojas (4). Las sustancias contenidas en la semilla permiten que continúe creciendo. Una vez que se agota este suministro, la plántula comienza a morir (de inanición) sin más nutrientes (en el caso de semillas pequeñas), y los descomponedores (bacterias/hongos) pueden atacarla. Las semillas más grandes desarrollan plántulas más grandes. En una solución nutritiva o en tierra, la plántula finalmente se convierte en una planta.

Los brotes y las plántulas son pequeñas y saludables fuentes de nutrientes. Con unos sencillos consejos, puedes cultivarlos fácilmente tú mismo. Consulta a continuación las instrucciones para germinar. Estas diminutas semillas contienen todo lo que la planta necesita para su posterior crecimiento, incluyendo numerosas vitaminas y minerales. Los brotes se consideran alimento predigerido o de fácil asimilación.

La germinación activa enzimas endógenas, descompone compuestos de reserva complejos y aumenta la disponibilidad de numerosos nutrientes. Esto hace que el brote sea nutricionalmente más valioso que las semillas secas. No es posible recomendar un momento ideal de consumo. Dependiendo del tiempo de germinación, los distintos componentes experimentan cambios diferentes; véase ¿ Cuánto tiempo deben germinar las semillas para obtener una densidad nutricional óptima?

Básicamente, todos los granos crudos y sin tratar germinan, al igual que semillas como las de girasol, las de calabaza o los pseudocereales como la quinoa. Las legumbres y los frutos secos también pueden germinar.

No todas las semillas son viables.

La calidad del alimento y su procesamiento determinan el éxito de la germinación. No todas las semillas disponibles comercialmente germinan. Se recomienda encarecidamente la calidad orgánica, ya que estos alimentos deben estar libres de inhibidores de la germinación. Además, el alimento debe estar crudo para que germine.

Es importante comprender que el agua solo proporciona el estímulo inicial para la germinación. La duración de la inmersión varía según la especie y variedad de la planta. Durante la germinación, la plántula necesita absolutamente oxígeno. Con suficiente oxígeno, seguirá creciendo hasta agotar sus reservas internas.

Sin oxígeno, el crecimiento se detiene y la plántula muere. Las bacterias y los hongos inician entonces el proceso de descomposición. La plántula sirve de alimento para las plantas, pero no para nosotros. ¡La limpieza es fundamental!

6.2 Resumen del tiempo de remojo y del tiempo de germinación

En la tabla a continuación, el tiempo de germinación se refiere al tiempo transcurrido desde el remojo hasta que el brote está listo para la cosecha. Lamentablemente, los sitios web suelen mostrar cifras diferentes; por ejemplo, un tiempo de germinación de 6 a 7 días para la quinua, lo cual es completamente irreal. Observe el brote y coseche según sea necesario, sin seguir un plazo fijo.

Los brotes demasiado largos se rompen fácilmente al enjuagarlos. Su bajo contenido en nutrientes suele detener su crecimiento y comienzan a echarse a perder. Al remojarlos, un tiempo prolongado solo es recomendable si los brotes se consumen inmediatamente después, sin dejar que sigan germinando. Porque la plántula puede ahogarse y pueden desarrollarse microorganismos dañinos. ¡Es importante enjuagarla 2 o 3 veces al día durante el remojo y la germinación!

Nunca consuma legumbres crudas: contienen la lectina tóxica fasina. Esta proteína se desnaturaliza tras 20 minutos de cocción (a 100 °C) y deja de ser tóxica. Los guisantes tirabeques frescos son una excepción; se pueden consumir crudos. Algunas legumbres se pueden consumir crudas tras el tiempo de remojo especificado, incluyendo el tiempo de germinación: brotes de frijol mungo y lentejas germinadas. Otras es mejor no consumirlas crudas, sino hervidas: por ejemplo, todos los tipos de frijoles comunes (frijoles rojos, frijoles blancos, frijoles negros, etc.), frijoles adzuki y garbanzos.

Semillas: Los brotes de semillas ricas en aceite, como las de lino, sésamo, chía y girasol, son más propensos a estropearse. Requieren una calidad y limpieza excepcionales. Lo ideal es dejar que germinen solo parcialmente.

Semillas mucilaginosas: albahaca, trigo sarraceno, chía, berro, linaza, rúcula, mostaza. Solo déjelas germinar y enjuáguelas con mucha frecuencia (aproximadamente 4 veces).

Germinación en la oscuridad: requieren oscuridad para germinar, por ejemplo, en un recipiente oscuro para germinar o cubriéndolas con una toalla de papel o algodón. Suelen ser semillas más grandes que pueden alcanzar la luz por sí solas: habas, frijoles adzuki, amaranto, anís, coliflor, brócoli, guisantes, garbanzos y remolacha.

Germinaciones dependientes de la luz: requieren luz para germinar, pero no luz solar directa. Muchas semillas de hierbas son germinaciones dependientes de la luz, como la alfalfa, la linaza, el fenogreco y la rúcula.

Particularmente aptos para el consumo crudo después de la germinación:22 Amaranto, fenogreco, mijo integral, espelta, hinojo, berro, linaza, remolacha, rúcula, mostaza, semillas de girasol, trigo.

Brotes especialmente populares: berro (para guarderías, etc.), alfalfa, brócoli, rábano, frijoles mungo (fáciles de cultivar).

No se deben consumir semillas de plantas solanáceas (berenjenas, patatas, pimientos, tomates), altramuces ni soja que contengan alcaloides, al menos no las partes verdes. Solo el calor reduce la solanina.

Tiempo de remojo y tiempo de germinación para legumbres, cereales, pseudocereales, semillas, frutos secos y semillas oleaginosas15,16,17

  • (*) de una fuente bibliográfica.21
  • (**) Nombre en la primera columna con dos estrellas (**) luego el número mayor se aplica como guía para plantar en contenedores para el tiempo de germinación.
  • (***) Consulte la información adicional que aparece debajo de la tabla ("Tenga en cuenta").

Legumbres

Tiempo de remojo (h)

Tiempo de germinación (días)

Observaciones

habas 12-24 3 germinador oscuro
frijoles adzuki (6-8) 12* 3* germinador oscuro
Guisantes (guisantes verdes) (10-24) 8* (3-4) 3* germinador oscuro
Guisantes, brotes** (8-24) 8* (hasta 14) 1-7* ***
garbanzos (6-24+) 12* (3-4) 3* Germinador oscuro, ligeramente a nuez.
frijoles rojos 12 3-4 ***
Lentes (lentes de placa) (8-12) 8* (3-4) 3* *** (grande) nuez
Lentejas (sin pelar) 0-2 3-4 *** (¡Las lentejas rojas/amarillas peladas no germinan!)
Altramuces (dulces) (24-48) 5-12 2-3 Germinadores oscuros, caso especial: remojar en agua salada durante 14 días.
frijoles mungo (6-12) 8* (3-4) 3* ***
frijoles negros 12 3-4 germinador oscuro
Soja 12-15 3-4 germinador oscuro
guisantes tirabeques 8 1-7 Se puede comer crudo , incluso sin germinar .

Grano

Tiempo de remojo (h)

Tiempo de germinación (días)

Observaciones

mijo marrón 4-12 1-3

Espelta

12

3-4

Suave, con sabor a nuez, ligeramente dulce.

cebada 6-12 2-3

Mijo

(6-8) 5*

(1-2) 1*

Maíz (maíz dulce) 12-24 3-4 germinador oscuro

avena sin cáscara

12-24

2-3

centeno

12

3-4

De sabor dulce solo en sus primeras etapas.

Arroz integral

12

3-4

Trigo blando ** 8* 1-7* = Hierba de trigo

Trigo

12

2-4

De sabor dulce solo en sus primeras etapas.

Semillas y pseudocereales

Tiempo de remojo (h)

Tiempo de germinación (días)

Observaciones

Alfalfa (lucerna) 4* (7-8) 7*

Germinadores dependientes de la luz, especialmente los sanos 21

Amaranto (6-8) 3* (3-5) 1* germinador oscuro
anís 10 germinador oscuro
Fenogreco (8) 6* (3-4) 3* Germinación dependiente de la luz, picante, amarga si la germinación tarda más.
semillas de brócoli (6-12) 6* (3-4) 7* Germinador oscuro, picante
Trigo sarraceno ** (8-16) 6-8* (2-3) 1-2*
daikon 8 - = Rábano de invierno
hinojo 10 7-10
Trébol 6* 7*
cilantro 4-12 ¿10?
Berro (berro de jardín) - 3-6 ligeramente picante
acelga suiza 8 8-10 brotes verdes
Perilla 12-24 - = Hoja de sésamo
Quinoa (0,5-6) 3* (6-7) 1*
Rábanos, rábano daikon 6-12 2-5 ligeramente picante
Remolacha (8-24) 4* 7* germinador oscuro
Rúcula - 2-3 6-7 T = Hierbas verdes
Mostaza 6 (2-5) 2-3 ligeramente picante
Semillas de sandía 8* 7*

Frutos secos, semillas oleaginosas

Tiempo de remojo (h)

Tiempo de germinación (días)

Observaciones

Anacardos

6

-

nunca crudo

cáñamo 4-6 3-4 germinador oscuro

Avellanas

8

-

semillas de calabaza

(12) 4*

(3-5) 7*

linaza 0-6 3-4 Suelen producir mucosidad; enjuáguese con más frecuencia.

nueces de macadamia

4-12

-

almendras

(4) 8*

-

nueces pecanas

8*

-

nueces de Brasil

8*

-

sésamo 2-4 2-5

Semillas de girasol **

(6-12) 6*

(1-2) 1-2*

de nuez

Nueces

(6) 8*

-

***Tenga en cuenta:

  • Brotes de guisantes: Estos germinan en la oscuridad, al igual que las judías escarlata (cuidado con las lectinas). Sus cotiledones permanecen en el suelo (germinación hipogeica), mientras que en la germinación epigea, el cotiledón muere posteriormente, pero realiza la primera fotosíntesis hasta que emergen las hojas siguientes. Los guisantes tirabeques se pueden consumir directamente con sus tiernas vainas.
  • Frijoles rojos: Germinan en tonos oscuros. Variedad de frijol común. Los frijoles rojos (Phaseolus vulgaris) se parecen a los frijoles adzuki (Vigna angularis) o a los frijoles escarlata (Phaseolus coccineus). Es posible confundirlos.
  • Lentejas (lentejas de azúcar (4-5 mm); lentejas medianas (5-6 mm), lentejas planas (6-7 mm), las lentejas gigantes son más grandes): germinan en la oscuridad. Las semillas solo germinan cuando están crudas, sin pelar y frescas. Las lentejas rojas y amarillas ya están peladas y, por lo tanto, no germinan, al igual que las lentejas marrones peladas. Las lentejas amarillas se obtienen pelando lentejas marrones o verdes. Las lentejas rojas sin pelar tienen una piel más oscura (según el país de origen), por lo que a menudo se venden como lentejas marrones, moradas o negras. Véase también el ingrediente "Lentejas crudas".
  • Frijoles mungo: particularmente fáciles de manejar: ¡necesitan oscuridad para desarrollar todo su sabor! Requieren mucha más agua para remojar, ya que pueden absorber hasta siete veces su peso seco. Manténgalos a temperatura ambiente (18-22 °C) y riéguelos tres veces al día durante la germinación. Se pueden comer crudos después de tres días de germinación. Después del cuarto día, a menudo se decoloran, se vuelven más amargos y menos tiernos. Estos frijoles son más fáciles de digerir que los frijoles europeos (no contienen fasina) y no causan hinchazón (no contienen trisacáridos indigeribles). Muy adecuados para principiantes. Ver Brotes de frijol mungo.
6.3 ¿Cuánto tiempo debe tardar la germinación para lograr una densidad de nutrientes óptima?

No existe una única respuesta a la pregunta sobre el período óptimo de germinación, y esto tiene fundamento científico. Los diferentes nutrientes y compuestos secundarios de las plantas alcanzan su punto máximo en distintos momentos. Este momento también depende de la especie vegetal específica.

En muchos casos, la germinación a corto plazo (24-48 h) es suficiente para alcanzar el "período máximo de desarrollo de nutrientes".

Los brotes de cereales y legumbres sintetizan ciertas vitaminas por sí mismos. En particular, los niveles de vitamina C aumentan significativamente en el trigo, el mijo, las judías mungo y los garbanzos, entre otros. La germinación también incrementa la vitamina E y algunas vitaminas del grupo B, incluidas las vitaminas B2 y B3. Sin embargo, también conlleva la pérdida de vitaminas hidrosolubles (incluidas las vitaminas B1 y B6 en el arroz). Un período de germinación más prolongado puede favorecer el aumento de estas vitaminas.32

La germinación mejora el valor biológico de las proteínas, debido a la proteólisis. El contenido proteico puede aumentar (maíz, arroz, mijo, trigo, garbanzos, judías verdes, lentejas), pero también es posible que disminuya. En cualquier caso, varía según el tiempo de remojo y germinación y el tipo de planta. Fluctuaciones similares se aplican al contenido de grasa y fibra.32

Se produce una descomposición (deseada) del ácido fítico, las sustancias que provocan flatulencia, los taninos y los inhibidores de la proteasa.

Otros compuestos alcanzan su concentración máxima solo después de un período de germinación más prolongado (más de 48 horas). Por ejemplo, los polifenoles y flavonoides en las lentejas generalmente aumentan durante la germinación. Sin embargo, la progresión exacta depende de la variedad. El contenido total de fenoles parece ser más alto el quinto día de germinación.28 Los brotes de brócoli de cinco días tenían el mayor contenido de sulforafano.26 En los frijoles mungo, el contenido de vitamina C es más alto el octavo día de germinación, alcanzando hasta 285 mg/100 g de peso seco. Esto corresponde a un aumento de 24 veces.27

Un tema completamente distinto trata sobre la regeneración de restos de cocina. Se trata de restos de verduras que pueden volver a brotar, como remolachas, apio, cebollas y ajos . Colocados en un recipiente con un poco de agua, desarrollarán nuevos brotes al cabo de un tiempo. Las cebollas o ajos germinados proporcionan verduras sabrosas. El jengibre y la cúrcuma también se pueden cultivar en macetas. Incluso los tallos de apio, las zanahorias, la lechuga romana, el colinabo, los puerros, etc., producirán nuevas hojas.

7. Instrucciones para la germinación

Cultivar brotes no requiere mucho: un germinador, semillas orgánicas y un poco de paciencia. En el caso más sencillo, basta con un frasco limpio con tapa de rosca y algunos agujeros. Quienes deseen disfrutar de brotes y plántulas con mayor frecuencia se beneficiarán de un germinador de frascos o un sistema de germinación de varios niveles.

1. Prepara los vasos.

Esterilice o hierva los vasos y utensilios. La limpieza es importante, ya que un ambiente húmedo favorece el crecimiento de moho.

2. Enjuague las semillas

Las semillas que se utilicen también deben estar limpias. Enjuáguelas bien con agua sobre un colador.

3. Remojar las semillas

Remoje las semillas en agua durante varias horas antes de la germinación. El agua absorbida permite que las semillas inicien el proceso de germinación. El tiempo de remojo varía entre 4 y 12 horas (véase la tabla anterior); el arroz requiere más tiempo.

4. Crecimiento de los brotes

Tras el remojo, enjuague bien las semillas por primera vez. Deseche el agua de remojo y rellene con agua fresca, luego vuelva a escurrir. Dependiendo de si las semillas germinan con luz o en la oscuridad, coloque los frascos en un lugar luminoso, pero no soleado, durante la germinación, o germine en la oscuridad bajo un paño de cocina. Para evitar que se encharquen, coloque los frascos con la abertura (tapa de malla o tela permeable al agua) hacia abajo, permitiendo que el agua drene. Enjuague los brotes con agua fresca dos o tres veces al día y deje que se escurran bien de nuevo.

Algunos tipos de semillas desarrollan raíces cubiertas de una pelusa blanca después de uno a tres días. No deben confundirse con moho.

5. Cosecha

Tras el tiempo de germinación deseado, enjuague los brotes por última vez y disfrútelos frescos y crujientes. Pueden enriquecer platos frescos y ensaladas de diversas maneras.

Escaldar los brotes (incluidos los de frijol mungo y lenteja) puede reducir el riesgo de contaminación bacteriana, especialmente si son comprados y no cultivados en casa. Sin duda, se pueden comer crudos. Los brotes de legumbres, como los de garbanzos o frijoles, solo deben consumirse cocidos.

Los brotes de cereales suelen tener un sabor suave y dulce, mientras que los rábanos, los berros y las lentejas ofrecen un sabor intenso y ácido. Las alubias y las semillas de girasol tienen un sabor a nuez.

Nota: Este artículo ha sido revisado. Por lo tanto, es posible que falten algunos pasajes mencionados en los comentarios o que su redacción sea diferente en la versión actual. Valoramos el contenido actualizado y revisamos periódicamente los artículos antiguos; sus comentarios son siempre bienvenidos.

Bibliografía - 33 Fuentes (Enlace a la evidencia)

1.*

Bei der Verwendung von Hülsenfrucht- und Getreidemischungen als Beikost ist der hohe Phytatgehalt des Breis ein wichtiges Kriterium für die Eisen- und möglicherweise auch Zinkversorgung von Säuglingen und Kleinkindern. Die Kalzium- und Magnesiumversorgung ist weniger problematisch, Kupfer hingegen nicht. Phytinsäure hemmt die Eisenaufnahme sowohl bei Säuglingen als auch bei Erwachsenen stark; selbst bei Eisenmangel kann die Absorption nur 2–5 % betragen. Ein vollständiger Abbau der Phytinsäure kann die Absorption bis zu fünffach steigern, während ein Abbau von 90 % (1 % bis 0,1 %) die Absorption etwa verdoppeln kann. Obwohl ein vollständiger Abbau der Phytinsäure dringend empfohlen wird, ist dies nicht immer möglich. Um eine Verdopplung der Eisenaufnahme aus einer eisenangereicherten Beikost zu erreichen, sollte das molare Verhältnis von Phytinsäure zu Eisen von seinem natürlichen Wert auf <1 oder besser <0,5 reduziert werden.

Obwohl Phytinsäure die Zinkaufnahme bei Erwachsenen hemmt, ist die Situation bei Säuglingen und Kleinkindern unklar. Bei jungen Säuglingen wurde eine relativ hohe Zinkaufnahme aus phytatreichen Getreide- und Hülsenfruchtmischungen beobachtet. Dennoch würde eine Reduzierung des Phytinsäuregehalts um 90 % (von 1 % auf 0,1 %) die Zinkaufnahme bei Erwachsenen voraussichtlich verdoppeln, und ein vollständiger Abbau könnte die Zinkaufnahme sogar noch weiter steigern. Würde das molare Verhältnis von Phytinsäure zu Eisen in eisenangereicherten Lebensmitteln auf unter 0,5 gesenkt, wäre ein deutlicher Anstieg der Zinkaufnahme bei Erwachsenen zu erwarten. Der Einfluss einer Phytinsäurereduktion auf die Zinkaufnahme bei Säuglingen und Kleinkindern scheint gering zu sein, bedarf aber weiterer Untersuchungen.

Narratives Review

DOI: 10.1093/jn/133.9.2973S

Study: weak evidence

Hurrell RF. Influence of vegetable protein sources on trace element and mineral bioavailability. J Nutr. 2003;133(9):2973S-2977S.

2.*

Phytic acid is a potent chelating agent, capable of binding to essential micronutrients such as zinc, iron, calcium, manganese, and magnesium [3]. This results in the formation of insoluble plant salt complexes that significantly reduce the bioavailability of bound minerals, inhibiting their absorption in the gastrointestinal tract [4] and thus leading to potential deficiencies, particularly in populations whose diets are based on foods high in phytic acid [5].

Narratives Review

DOI: 10.3390/nu16234069

Study: weak evidence

Chondrou T, Adamidi N et al. Dietary phytic acid, dephytinization, and phytase supplementation alter trace element bioavailability—a narrative review of human interventions. Nutrients. 2024;16(23):4069.

3.*

An increase in LDH release, histone-associated DNA fragmentation and cell membrane blebbing in Caco-2 cells treated with PA (IP6) may indicate that one of the mechanisms by which IP6 exerts its antitumorigenic effect which is observed in animal models is by inducing apoptotic activity in the tumor cell. Another mechanism may be by boosting the activity of natural killer (NK) cells which are immune system cells that can kill tumor cells demonstrated the mechanism of IP6 at the biochemical level with its involvement in a system of messenger cells or the signal transduction pathway which can be activated by tumor promoters. The tumor promoters activate protein 1 (AP-1), a crucial component of tumor growth, by way of an enzyme: phosphatidyl inositol-3 (PI-3) kinase. IP6 is found to have a structure very similar to a potent inhibitor of the enzyme PI-3 kinase, thus working against, or inhibiting the tumor by blocking the action of the enzyme. IP6 could also reduce the risk of cancer by increasing the activity of glutathione S-transferase which is a key enzyme responsible for detoxifying various chemicals including carcinogens (Challa et al., 1997).

Labortstudien (in vitro und in vivo)

DOI: 10.1016/j.lwt.2005.07.012

Study: weak evidence

Verghese M, Rao D et al. Anticarcinogenic effect of phytic acid (IP6): Apoptosis as a possible mechanism of action. LWT Food Science and Technology 2006;39(10):1093–1098.

4.*

Another potential mechanism for the effects of inositol compound may be via its antioxidant properties. This function of IP6 occurs by chelation of Fe3+ and
suppression of hydroxyl radical formation [24]. Therefore, IP6 may reduce carcinogenesis mediated by active oxygen species and cell injury via its antioxidative function. This activity seems to be closely related to its unique structure. The phosphate grouping in positions 1,2,3 (axial-equatorial-axial) is unique to IP6, specially interacting with iron to inhibit its ability to catalyze hydroxyl radical formation, making IP6 a strong antioxidant. The anticancer action of IP6 may be further related to its mineral binding ability. IP6, by binding with Zn2+, can affect thymidine kinase activity, an
enzyme essential for DNA synthesis [13, 22, 23, 25].

Inositol hexaphosphate (IP6) is a naturally occurring compound that is abundantly found in grains, cereals, nuts, and foods that are high in fiber content. IP6 has been found to have significant antitumor properties in regard to reduction of tumor growth in both in vivo and in vitro studies for prostate [1, 2], breast [3], and colon [4] cancers. To date the effect of IP6 in the treatment of pancreatic cancer has not been reported.

Laborstudie (in vitro)

DOI: 10.1016/j.jss.2005.01.022

Study: weak evidence

Somasundar P, Riggs DR et al. Inositol hexaphosphate (IP6): a novel treatment for pancreatic cancer. J Surg Res. 2005;126(2):199-203.

5.*

Die Studie mit stabilen Isotopen basierte auf einer Einzelmahlzeit, wodurch der Effekt der Phytinsäurereduktion auf die Eisenaufnahme möglicherweise überbewertet wurde [9] . Cook et al. [53] berichteten zuvor von einem signifikant geringeren Anstieg der Eisenaufnahme durch die Gesamtnahrung (2,5-fach) im Vergleich zum Anstieg durch eine Einzelmahlzeit (5,9-fach). Darüber hinaus kann nicht ausgeschlossen werden, dass andere, unbekannte Bestandteile des Weizenmehls die erhöhte Eisenaufnahme verursacht haben. Da Phytinsäure jedoch der Hauptinhibitor der Eisenaufnahme ist [9] und der signifikant reduzierte Phytinsäuregehalt darauf hindeutet, dass die natürliche Phytase im Weizen höchstwahrscheinlich für die Verbesserung der Eisenaufnahme verantwortlich ist, ist dies der Grund.

Interventionsstudie mit Crossover‑Design

DOI: 10.1371/journal.pone.0070613

Study: moderate evidence

Koréissi-Dembélé Y, Fanou-Fogny N et al. Dephytinisation with intrinsic wheat phytase and iron fortification significantly increase iron absorption from fonio (Digitaria exilis) meals in West African women. PLoS One. 2013;8(10):e70613.

6.*

IP 5 hemmt die Eisenaufnahme, während IP 3 und IP 4 in isolierter Form keine solche Wirkung zeigen. IP 3 und IP 4 in verarbeiteten Lebensmitteln tragen vermutlich durch die Bindung von Eisen zwischen verschiedenen Inositolphosphaten zur negativen Wirkung auf die Eisenaufnahme bei . Um die Eisenaufnahme aus Getreide und Hülsenfrüchten zu verbessern, müssen die Inositolphosphate zu weniger phosphorylierten Inositolphosphaten als IP 3 abgebaut werden .

Zusammenfassend lässt sich sagen, dass die Zugabe von IP 5 zu Weissweizenbrötchen die Eisenaufnahme deutlich weniger stark hemmt als IP 6 , während IP 4, das durch säurekatalysierte Hydrolyse entsteht, und Ins(1,2,6)P 3 die Eisenaufnahme nicht signifikant beeinträchtigen. Die Ergebnisse deuten zudem darauf hin, dass IP 3 und IP 4 durch Wechselwirkungen mit höher phosphorylierten Inositolphosphaten zur negativen Wirkung auf die Eisenaufnahme verarbeiteter Lebensmittel beitragen, was zu einer Erhöhung der Mineralbindungskapazität führt. Diese Erkenntnisse legen nahe, dass der Phytatabbau nicht nur von IP 5 und IP 6 , sondern auch von IP 3 und IP in Getreide- und Sojaprodukten beispielsweise im Haushalt oder während des Herstellungsprozesses erfolgen muss, um die Eisenaufnahme solcher Lebensmittel zu verbessern.

Interventionsstudie mit Crossover-Design

DOI: 10.1093/ajcn.70.2.240

Study: moderate evidence

Sandberg AS, Brune M et al. Inositol phosphates with different numbers of phosphate groups influence iron absorption in humans. Am J Clin Nutr. 1999;70(2):240-246.

7.*

Both in vitro and in vivo methods have been used to estimate the bioavailability of Fe, Zn and Ca in plant foods. Some in vitro methods are based on a two-stage simulated digestive process of the food or test meal, followed by determination of the dialysable Fe, Zn or Ca released. In general, the magnitude of the responses measured using these methods are not the same as those observed in human subjects, but some of these methods have been used to rank foods with respect to the effect of processing and preparation practices on mineral bioavailability (Latunde-Dada et al. 1998). For example, increases in dialysable Fe, Zn and Ca have been reported after processing porridges prepared from legumes such as chickpea (Cicer arietinum) and black gram (Phaseolus mungo) flours and/or cereal flours such as maize, sorghum and rice by fermentation with a starter culture (Svanberg et al. 1993; Jood & Kapoor, 1997; Sharma & Khetarpaul, 1998) and/or by soaking and germination (Svanberg et al. 1993; Mbithi-Mwikya et al. 2002).

Narratives Review

DOI: 10.1079/pns2006489

Study: weak evidence

Gibson RS, Perlas L, Hotz C. Improving the bioavailability of nutrients in plant foods at the household level. Proc Nutr Soc. 2006;65(2):160-168.

8.*

Der Abbau von Phytinsäure wurde zunächst in einer Mischung aus poliertem Reis (30 %) und Vollkornkichererbsen (60 %) mit 10 % Vollkornbuchweizen als Phytasequelle untersucht. Buchweizen weist eine geringere Phytaseaktivität als Weizen und Roggen auf, ist aber glutenfrei und besitzt daher anderes interessantes Potenzial. Es wurde in einer Mischung auf Reisbasis als Beispiel für ein glutenfreies Getreide getestet. Der relativ niedrige anfängliche Phytinsäuregehalt (3,6 mg/g) wurde nach 200 Minuten Inkubation bei 50 °C in einer Suspension mit einem Trockenmassegehalt von 20 % und einem pH-Wert von 5,0 vollständig abgebaut (Abbildung 3). Zusätzlich wurde der Phytinsäureabbau unter denselben Bedingungen in der Reis-Kichererbsen-Mischung ohne Zugabe von Buchweizen als Phytasequelle gemessen (Ergebnisse nicht dargestellt). Nach 200 Minuten war der anfängliche Phytinsäuregehalt von 3 mg/g auf 0,7 mg/g IP3, 0,7 mg/g IP4, 0,2 mg/g IP5 und 0,1 mg/g IP6 abgebaut, vergleichbar mit dem Gehalt nach 120 Minuten in der Buchweizen-haltigen Mischung. Die geringe Phytaseaktivität von Kichererbsen und Reis trug somit massgeblich zum Abbau von Inositolphosphaten bei. Die Zugabe von Buchweizen verkürzte jedoch die Inkubationszeit für den vollständigen Abbau von Phytinsäure erheblich.

Labor‑/Technologie‑Studie (in‑vitro food processing study)

DOI: 10.1111/j.1365-2621.2003.tb12342.x

Study: weak evidence

Egli I, Davidsson L et al. Phytic Acid Degradation in Complementary Foods Using Phytase Naturally Occurring in Whole Grain Cereals. Journal of Food Science. 2006;68(5):1855-1859.

9.*

Derzeit liegen nur wenige Studien zum Einfluss von Phytat auf die Bioverfügbarkeit von Eisen, Zink und Kalzium bei Säuglingen und Kleinkindern vor. Daher ist unklar, ob die für die Ernährung Erwachsener als wünschenswert geltenden Phytat-Mineralstoff-Molverhältnisse auch für die Beikost von Säuglingen und Kleinkindern geeignet sind [22]. Ebenso ist ungewiss, ob Kinder sich an die hemmende Wirkung einer phytatreichen Beikost auf die Absorption dieser Mineralstoffe anpassen können. Es gibt Hinweise darauf, dass Erwachsene sich an eine zink- und phytatarme Ernährung anpassen können, indem sie die Zinkabsorption im Darm erhöhen. Eine vergleichbare Anpassung scheint jedoch bei phytatreichen Diäten nicht stattzufinden [23], obwohl die endogene Zinkausscheidung im Stuhl möglicherweise abnimmt [24]. Ebenso ist die Eisenaufnahme bei Erwachsenen, die sich phytatreich ernähren, nicht erhöht.
[25] Dieser Trend ist wahrscheinlich auch bei Kindern zu beobachten, da die Wirkung von Verstärkern und Hemmern der Eisenaufnahme bei Erwachsenen und Säuglingen vergleichbar ist.

Beispielsweise verbesserte selbst der vollständige Phytatabbau durch kommerzielles Phytaseenzym die Eisenaufnahme aus mit Wasser zubereiteten Getreidebreien, nicht aber aus mit Milch zubereiteten Breien [17]. Dieser Befund ist wichtig, da Hersteller häufig empfehlen, angereicherte Beikost mit Milch statt mit Wasser zuzubereiten. Auch der Gesundheitszustand von Säuglingen und Kleinkindern hat wahrscheinlich einen grossen Einfluss auf die Mineralstoffaufnahme, insbesondere in Umgebungen, in denen Umweltenteropathie weit verbreitet sein kann [71, 72].

Die Entphytinisierung im industriellen Massstab kann durch Mahlen oder die Zugabe exogener Phytase-Enzyme (Myo-Inositol-Hexakisphosphat-Phosphohydrolasen) erreicht werden. Beim Mahlen zur Entfernung der Kleie und/oder des Keimlings von Getreide können bis zu 90 % des Phytats verloren gehen. Es stehen verschiedene Phytase-Quellen zur Verfügung. Viele werden aus Schimmelpilzen gewonnen, die in einem breiteren pH-Bereich (2,5 bis 5,5) als Getreidephytasen (4,5 bis 5,6) und unter den physiologischen Bedingungen von Magen und Dünndarm wirken. Zu ihnen gehören Aspergillus ficuum (eine gentechnisch veränderte Variante von A. niger), A. oxyzae und A. fumigatus. A. fumigatus hat den zusätzlichen Vorteil, dass er Hitzebehandlungen bei Temperaturen bis zu 100 °C für 20 Minuten übersteht.
[60] Diese kommerziellen Phytase-Enzyme können Phytat in etwa 2 Stunden vollständig abbauen, vorausgesetzt, das Phytase-Enzym wird einer wässrigen Suspension der Beikost bei dem pH-Optimum des Enzyms zugesetzt.

Konventionelle Wärmebehandlungen führen nur zu mässigen Verlusten (5 % bis 15 %) an Phytinsäure, abhängig von der Pflanzenart, der Temperatur und dem pH-Wert. Das Einweichen von Getreide- und, in geringerem Masse, Hülsenfruchtmehlen unter optimalen Bedingungen kann deren IP5- und IP6-Gehalt deutlich reduzieren.

Cereals with the highest phytase activity are whole wheat, whole rye, buckwheat, and barley, whereas sorghum, maize, and rice have low phytase activity. Legumes and oilseeds have lower phytase activity than cereals.

Narratives Review

DOI: 10.1177/15648265100312S206

Study: weak evidence

Gibson RS, Bailey KB, Gibbs M, Ferguson EL. A review of phytate, iron, zinc, and calcium concentrations in plant-based complementary foods used in low-income countries and implications for bioavailability. Food Nutr Bull. 2010;31(2 Suppl):S134-146.

10.*

Mechanismus der Phytathydrolyse im Darm Studien zum Phytatabbau im menschlichen Darm sind selten. Frühe Experimente zeigten, dass ein Teil des Phytats im menschlichen Darm abgebaut wird. Bereits 1935 beobachteten McCane und Widdowson 36–63 % Phytat im Stuhl von Erwachsenen nach einer phytatreichen Ernährung und berechneten den mittleren Phytatabbau auf 54 ± 8 % [151]. Dies wurde durch ein späteres Experiment bestätigt, das eine Phytat-Phosphor-Absorption von 50 % zeigte [24].

Magen
Bei Ileostomiepatienten stellten Sandberg et al. 1986 [155–158] einen Phytatabbau von 56–66 % während der gesamten Passage durch Magen und Dünndarm fest, wenn die Nahrung aktive Phytasen enthielt. Wurden die Phytasen in der Nahrung durch Extrusion oder Wärmebehandlung inaktiviert,
sinkt der gesamte Phytatabbau im oberen Darmabschnitt auf 0–28 % [155–158].

Tabelle zu Phytinsäure in Lebensmitteln (2,3,4,5)

Narratives Review

DOI: 10.1002/mnfr.200900099

Study: weak evidence

Schlemmer U, Frølich W et al. Phytate in foods and significance for humans: food sources, intake, processing, bioavailability, protective role and analysis. Mol Nutr Food Res. 2009;53(Suppl 2):S330-S375.

11.*

Aufgrund des hohen Phytatgehalts von Getreidebreien kann die Eisenaufnahme aus natürlichem und angereichertem Eisen sehr gering sein (6). Die Aufnahme lässt sich durch die Zugabe von Ascorbinsäure ( 4,6,7,8 ), EDTA (9 ) sowie durch den Abbau oder die Entfernung von Phytinsäure (10) erhöhen. Der Phytinsäuregehalt ist in Vollkornmehlen am höchsten und kann durch das Entfernen der Schale deutlich reduziert werden (11). Die Eisenaufnahme ist jedoch selbst bei Breien aus Mehlen mit niedrigem Ausmahlungsgrad gering (6), da bereits geringe Mengen an Phytat die Eisenaufnahme hemmen (10). Phytinsäure in Getreideprodukten kann vollständig durch Phytasen abgebaut werden. Diese Enzyme spalten sukzessive die Phosphatgruppen von der Phytinsäure ab, bis diese kein Eisen mehr bindet. Phytinsäure wurde in Beikostgetreide vollständig abgebaut, indem man kommerzielle exogene Phytasen hinzufügte (12) oder die natürlichen Phytasen durch eine Kombination aus Einweichen, Keimen und Fermentieren aktivierte (13).

Eine weitere Erkenntnis der vorliegenden Studie war, dass der positive Effekt der Entphytinisierung auf die Eisenaufnahme durch die Zubereitung der Weizenbreie mit Milch anstelle von Wasser stark verringert oder sogar vollständig aufgehoben wurde 

Interventionsstudie mit Crossover‑Design

DOI: 10.1093/ajcn/77.5.1213

Study: moderate evidence

Hurrell RF, Reddy MB et al. Degradation of phytic acid in cereal porridges improves iron absorption by human subjects. Am J Clin Nutr. 2003;77(5):1213-1219.

12.*

Keimung hingegen steigerte den Nährstoffgehalt und die Phytaseaktivität und senkte gleichzeitig den Phytinsäuregehalt. Daraus lässt sich schliessen, dass die Keimung eine einfache Methode darstellt, um die Phytaseaktivität zu erhöhen und den Phytinsäuregehalt zu senken sowie den Nährwert von Quinoa zu verbessern. 

Laborstudie

DOI: 10.3390/foods12020389

Study: weak evidence

Maldonado-Alvarado P, Pavón-Vargas DJ, Abarca-Robles J, Valencia-Chamorro S, Haros CM. Effect of Germination on the Nutritional Properties, Phytic Acid Content, and Phytase Activity of Quinoa (Chenopodium quinoa Willd). Foods. 2023;12(2):389.

13.*

In der populärwissenschaftlichen Literatur wird behauptet, dass das Einweichen von Nüssen die Bioverfügbarkeit von Mineralstoffen erhöht. Studien an Hülsenfrüchten und Getreide zeigen, dass Einweichen den Phytatgehalt senkt. Für Nüsse gibt es jedoch keine Belege, die diese Behauptungen stützen oder widerlegen. Wir untersuchten die Auswirkungen verschiedener Einweichmethoden auf die Phytat- und Mineralstoffkonzentrationen von ganzen und gehackten Mandeln, Haselnüssen, Erdnüssen und Walnüssen. Die Behandlungen waren: 1. Roh; 2. 12 Stunden in Salzlösung eingeweicht; 3. 4 Stunden in Salzlösung eingeweicht; 4. 12 Stunden in Wasser eingeweicht. Die Phytatkonzentrationen wurden mittels Hochleistungsflüssigkeitschromatographie (HPLC) und die Mineralstoffkonzentrationen mittels induktiv gekoppelter Plasma-Massenspektrometrie (ICP-MS) analysiert. Die Unterschiede in den Phytatkonzentrationen zwischen behandelten und unbehandelten Nüssen waren gering und lagen zwischen −12 % und +10 %. Insgesamt führte das Einweichen zu niedrigeren Mineralstoffkonzentrationen, insbesondere bei gehackten Nüssen, und verbesserte das molare Verhältnis von Phytat zu Mineralstoffen nicht. Diese Forschung stützt nicht die Behauptung, dass die „Aktivierung“ von Nüssen zu einer höheren Bioverfügbarkeit von Nährstoffen führt.

Obwohl das Einweichen von Lebensmitteln in Ländern mit niedrigem Einkommen erfolgreich zur Reduzierung des Phytatgehalts von Getreide und Hülsenfrüchten eingesetzt wurde (Hotz & Gibson, 2001; Kruger, Oelofse & Taylor, 2014; Majzoobi, Pashangeh, Farahnaky, Eskandari & Jamalian, 2014; Perlas & Gibson, 2002), haben nur wenige Studien diesen Prozess bei Nüssen untersucht. Eine aktuelle Studie von Lin et al. berichtete über einen Anstieg des Phytatgehalts nach dem Einweichen von Mandeln (Lin et al., 2017). Dies ist wahrscheinlich auf die Kombination aus minimalem Phytatverlust während des Einweichens und Feuchtigkeitsverlust beim Trocknen zurückzuführen, was insgesamt zu einem höheren Phytatgehalt in Mandeln nach dem Einweichen und Trocknen führt.

Die Unterschiede in den Phytatkonzentrationen zwischen den Behandlungen verringerten sich nach Korrektur des Feuchtigkeitsverlusts. Bei Mandeln gab es keinen Hinweis auf einen Unterschied zwischen den Behandlungen. Dies stützt nicht die Behauptungen in der populärwissenschaftlichen Literatur, dass das Einweichen oder „Aktivieren“ von Mandeln zu einer Reduktion des Phytatgehalts und einer Verbesserung der Bioverfügbarkeit von Mineralstoffen führt (Cottis, 2012; Grossmann, 2014; Kimiharris, 2008; Mack, 2013; Nagel, 2010). Walnüsse waren die einzige Nussart, bei der wir eine statistisch signifikant niedrigere Phytatkonzentration in allen Einweichbehandlungen im Vergleich zu unbehandelten Walnüssen beobachteten. Es ist wahrscheinlich, dass die beobachteten Reduktionen des Phytatgehalts überwiegend auf passive Diffusion oder Auswaschung zurückzuführen sind (Elgi, Davidsson, Jullerat, Barclay & Hurrell, 2002; Hotz & Gibson, 2001). Ein weiterer möglicher Mechanismus wäre die
Hydrolyse von Phytat durch das endogene Enzym Phytase, die jedoch
in der vorliegenden Studie nicht untersucht wurde.

Experimentelle Laborstudie

DOI: 10.1016/j.foodchem.2020.126529

Study: weak evidence

Kumari S, Gray AR, Webster K, Bailey K, Reid M, Kelvin KAH et al. Does ‘activating’ nuts affect nutrient bioavailability? Food Chemistry. Juli 2020;319:126529.

14.*

In einer zweiten Studiengruppe wurde untersucht, inwieweit Ascorbinsäure die hemmende Wirkung bestimmter Nüsse auf die Eisenaufnahme aufheben kann (Tabelle 2). 25 mg Ascorbinsäure verbesserten die Eisenaufnahme aus einer Mahlzeit aus Brot und Erdnüssen signifikant (t = 3,4, p < 0,005). Eine höhere Dosis von 50 mg Ascorbinsäure stellte die geometrische mittlere Eisenaufnahme aus einer Mahlzeit aus Brot und Erdnüssen auf einen Wert wieder her, der mit der Aufnahme aus einer Mahlzeit aus Brot allein vergleichbar war (t = 0,36, p > 0,1). Bei Paranüssen verbesserte 25 mg Ascorbinsäure die geometrische mittlere Eisenaufnahme aus der Mahlzeit aus Brot und Nüssen auf einen Wert, der dem Wert von Brot allein ähnelte (t = 1,2, p > 0,1). 50 mg Ascorbinsäure verbesserten die geometrische mittlere Eisenaufnahme aus einer Mahlzeit aus Brot und Paranüssen signifikant (t = 5,0, p < 0,001).

Kokosnuss war jedoch die einzige Nuss, die hinsichtlich ihrer Auswirkungen auf die Eisenaufnahme aus einer Brotmahlzeit neutral war und deutlich geringere Konzentrationen an Phytat und Polyphenolen enthielt als alle anderen Nüsse.

Interventionsstudie mit Crossover‑Design

DOI: 10.1093/ajcn/47.2.270

Study: moderate evidence

Macfarlane BJ, Bezwoda WR et al. Inhibitory effect of nuts on iron absorption. Am J Clin Nutr. 1988;47(2):270-274.

15.

Website

Smarticular: Einweichen ja oder nein? Einweich-Einmaleins für Nüsse, Bohnen & Co.

16.

Website

Sprossen-Selbstgemacht: Keimzeiten Sprossen-Sorten.

17.

Website

Gundja: Sprossen-Special.

18.*

Experimentelle Laborstudie (in‑vitro Lebensmittel‑/Prozessstudie)

DOI: 10.1111/j.1365-2621.1992.tb14340.x

Study: weak evidence

Larsson M, Sandberg AS. Phytate Reduction in Oats during Malting. Journal of Food Science. 1992;57(4):994-997.

19.*

 In Fingerhirse betrug der mittlere Rückgang nach 96 bzw. 72 Stunden 72,3 % bzw. 54,3 %. Das Mälzen führte nach 72 bzw. 96 Stunden zu einer durchschnittlichen Reduktion des Phytinsäuregehalts um 23,9 % bzw. 45,3 %. Das Ausmass der Reduktion variierte je nach Getreidesorte. Die Fermentation erhöhte den Gehalt an verfügbarem Eisen, Mangan und Calcium sowohl in Sorghum als auch in Fingerhirse. Der Gehalt an verfügbaren Mineralstoffen war nach der Fermentation in Fingerhirse im Allgemeinen höher als in Sorghum. Die Fermentation war zudem effektiver als das Mälzen bei der Reduktion von Phytinsäure in Sorghum und Fingerhirse. Einfache, traditionelle Lebensmittelverarbeitungsmethoden können daher zur Steigerung der Mineralstoffverfügbarkeit eingesetzt werden.

Experimentelle Laborstudie (in‑vitro Lebensmittel‑/Prozessstudie)

DOI: 10.1177/15648265020233S14

Study: weak evidence

Makokha AO, Oniang'o RK et al. Effect of traditional fermentation and malting on phytic acid and mineral availability from sorghum (Sorghum bicolor) and finger millet (Eleusine coracana) grain varieties grown in Kenya. Food Nutr Bull. 2002;23(3 Suppl):241-245.

20.*

Einweichen, Keimen und Fermentieren führten zu unterschiedlichen Reduktionen des Phytinsäuregehalts in braunem Reis. Der effektivste Ansatz (AF3) konnte den Gesamtphytinsäuregehalt um 96 % senken und das molare Verhältnis von Phytinsäure zu Zink unter 5 reduzieren. Die Nassverarbeitung (ausser Einweichen nach dem Erhitzen) führte zu einem Massenverlust von 1–20 % und einem ähnlichen Zinkverlust. Der starke Rückgang des Verhältnisses deutet darauf hin, dass insbesondere die Fermentation ein erfolgversprechender Weg zur Steigerung der Zinkbioverfügbarkeit ist. Allerdings zeigten In-vitro-Löslichkeitsmessungen von Zink nur geringe Verbesserungen gegenüber unbehandeltem braunem Reis. Dies könnte auf das Vorhandensein von Matrixbestandteilen wie Ballaststoffen oder Phosphaten zurückzuführen sein, die zur Bildung unlöslicher Zinkkomplexe führen. Es muss noch untersucht werden, inwieweit dies die In-vitro-Löslichkeit und Bioverfügbarkeit beeinflusst.

Mit Anreicherungsstarter fermentierter Reis (AF3) wies den niedrigsten Phytinsäuregehalt (0,7 mg g⁻¹) auf.

Auch die natürliche Fermentation (NF) reduzierte den anfänglichen Phytinsäuregehalt um 50 %. Während der Keimung sank der Phytinsäuregehalt leicht von 11,7 auf 8,4 mg g⁻¹, während der Einweichphase und weiter von 12,9 auf 5,7 mg g⁻¹ während des Keimprozesses über einen Zeitraum von 12–72 Stunden.

Experimentelle Laborstudie

DOI: 10.1016/j.foodchem.2008.02.064

Study: weak evidence

Liang J, Han BZ, Nout MJR, Hamer RJ. Effects of soaking, germination and fermentation on phytic acid, total and in vitro soluble zinc in brown rice. Food Chemistry. 2008;110(4):821–828.

21.

Book: moderate evidence

Hetrich B. Growing Your Own Living Foods: Sprouting The Easy Way. ‎New Life Books; 2015.

22.

Website

Sprossen-Keimlinge: Welche Keimlinge kann man roh essen?

23.

Book: moderate evidence

Biesalski HK, Bischoff SC, Pirlich M, Weimann A, Herausgeber. Ernährungsmedizin: Ernährungsmedizin 5. Auflage-Thieme: Stuttgart, NewYork. 2018.

24.*

Phytat kann in vitro und in Ratten mit Streptozotocin-Nicotinamid-induziertem Typ-2-Diabetes mellitus dosisabhängig die Aktivität von α-Glucosidase und α-Amylase hemmen, vergleichbar mit dem Standardmedikament Acarbose [ 103 ]. Die antidiabetische Wirkung der Phytinsäure beruht möglicherweise teilweise auf der verminderten Aktivität der intestinalen Amylase. Dies deutet auf eine geringere Bildung und anschliessende Absorption von Kohlenhydratverdauungsprodukten hin, was zu einem geringeren prozentualen Anstieg des Blutzuckerspiegels führt.

Epidemiologische Studien am Menschen

Die mediterrane und die DASH-Diät haben wiederholt ihre Wirksamkeit bei der Verbesserung der Blutzuckerkontrolle und der Senkung des kardiovaskulären Risikos unter Beweis gestellt. Darüber hinaus sind diese Diäten reich an Phytaten. Diese positiven Auswirkungen auf die kardiovaskuläre Gesundheit und die Blutzuckerkontrolle könnten auf die antioxidativen und entzündungshemmenden Eigenschaften der mediterranen Ernährung zurückzuführen sein. Verbesserungen der Blutzuckerkontrolle und eine Senkung des HbA1c-Werts wurden als Folge einer erhöhten Zufuhr von Hülsenfrüchten und Vollkornprodukten berichtet [ 107 , 108 , 109 ]. Eine hohe Zufuhr von Ballaststoffen, insbesondere löslichen Ballaststoffen, verbessert die Blutzuckerkontrolle, senkt den Insulinspiegel und reduziert die Plasmalipidkonzentrationen bei Patienten mit Typ-2-Diabetes.

Zum anderen zeigt es eine immunstimulierende Wirkung auf NK-Zellen, die mit einer Reduktion der Tumorinzidenz einhergeht.

Kontroversen um die Phytataufnahme

Die Bioverfügbarkeit beschreibt die Menge an Nährstoffen (Mikro- und Makronährstoffen), die von Zellen und Organen aufgenommen und bereitgestellt werden. Jede Verringerung der Bioverfügbarkeit von Nährstoffen kann unsere Gesundheit beeinträchtigen. Da unser Körper keine Endophytase besitzt, kann Phytat nicht abgebaut werden [ 186 ]. Die in Phytat chelatierten Mineralstoffe sind daher nicht bioverfügbar. Aufgrund dieser Erkenntnis gilt Phytat als „Antinährstoff“. Dieser Effekt kann jedoch durch den phytaseinduzierten Abbau von Phytinsäure während der Lebensmittelverarbeitung (durch in der Pflanze/im Mehl enthaltene Phytasen) sowie während der Verdauung (durch die Phytaseaktivität der Darmflora) umgekehrt werden [ 187 ]. Andere Techniken sind ebenfalls wirksam bei der Reduzierung des Phytatgehalts [ 188 ], so reduziert Kochen bei 95° für eine Stunde den Phytatgehalt um 11–80% [ 188 ], Einweichen reduziert den Phytatgehalt um 17–80% und Keimen reduziert den Phytatgehalt um mehr als 60% [ 188 ].

Einem früheren Bericht zufolge hemmt Phytinsäure die Aktivität von Enzymen, die für den Proteinabbau im Dünndarm und Magen notwendig sind (Kies et al. 2006 ).

Narratives Review

DOI: 10.3390/antiox12010146

Study: weak evidence

Pujol A, Sanchis P et al. Phytate intake, health and disease: “let thy food be thy medicine and medicine be thy food”. Antioxidants. 2023;12(1):146.

25.*

Mahlen

Das Mahlen ist die traditionellste Methode, die Kleieschicht vom Getreide zu trennen. Dabei wird das Getreide zu Mehl vermahlen. Durch das Mahlen werden Antinährstoffe (z. B. Phytinsäure, Lektine, Tannine) aus der Kleie entfernt. Allerdings hat diese Technik den Nachteil, dass auch wichtige Mineralstoffe verloren gehen (Gupta et al. 2015 ).

Beispielsweise können endogene oder exogene Phytaseenzyme während des Einweichens die In-vitro-Löslichkeit von Mineralstoffen wie Zink und Eisen um 2 bis 23 % erhöhen (Vashishth et al. 2017 ). Eine frühere Studie von Greiner und Konietzny ( 2006 ) zeigte, dass Einweichen den Phytatgehalt bei 45 °C und 65 °C signifikant reduzierte. Das Einweichen von Getreide und Hülsenfrüchten erwies sich als sehr wirksam, um die Mineralstoffkonzentration und die Proteinverfügbarkeit zu erhöhen und gleichzeitig den Phytinsäuregehalt zu senken (Coulibaly et al. 2011 ). Eine weitere Studie berichtete, dass die Phytinsäurekonzentration in Kichererbsen um 47,45 bis 55,71 % sank, wenn die Einweichzeit von 2 auf 12 Stunden verlängert wurde (Ertaş und Türker 2014 ).

In Getreide bildet Phytinsäure normalerweise Komplexe mit Metallkationen wie Eisen, Zink und Kalzium sowie mit Proteinen. 

Eine weitere Studie berichtete zudem, dass sich die Nährstoffqualität von Hülsenfrüchten durch Kochen aufgrund der Reduzierung des Lektin- und Saponingehalts deutlich verbesserte (Maphosa und Jideani 2017 

Narratives Review

DOI: 10.1186/s43014-020-0020-5

Study: weak evidence

Samtiya M, Aluko RE, Dhewa T. Plant food anti-nutritional factors and their reduction strategies: an overview. Food Production, Processing and Nutrition. 2020;2(1):6.

26.*

The highest sulforaphane content in broccoli sprouts were 233.80 μg/g DW in 5-day-old sprouts and 1555.95 μg/g DW at day 4 of storage.

Laborstudie

DOI: 10.1007/s13197-016-2452-0

Study: weak evidence

Tian M, Xu X, et al. Optimisation of enzymatic production of sulforaphane in broccoli sprouts and their total antioxidant activity at different growth and storage days. J Food Sci Technol. 2017;54(1):209-218.

27.*

Germination of mung beans dramatically increased vitamin C content in mung bean sprouts in a time-dependent manner and reached the peak on day 8 of germination up to 285 mg/100 g DW, almost 24 times higher than the initial concentration in mung bean seeds (p < 0.05). On fresh weight basis, one serving of mung bean sprouts (about 104 g) provides 21.6 mg of vitamin C, which could meet 36% of Daily Value (DV). 

Laborstudie

DOI: 10.1021/jf304443u

Study: weak evidence

Guo X, Li T, et al. Effect of germination on phytochemical profiles and antioxidant activity of mung bean sprouts (Vigna radiata). J Agric Food Chem. 2012;60(44):11050-11055.

28.*

Phenolics content increased from 1341.13 mg/100 g DW in raw lentil seeds to 1411.50, 1463.00, 1630.20 and 1510.10 in those samples germinated for 3, 4, 5 and 6 days, respectively. Sprouted seeds had higher DPPH radical scavenging and reducing power activities.

Laborstudie

DOI: 10.17306/J.AFS.2015.3.25

Study: weak evidence

Fouad AA, Rehab FM. Effect of germination time on proximate analysis, bioactive compounds and antioxidant activity of lentil (Lens culinaris Medik.) sprouts. Acta Sci Pol Technol Aliment. 2015;14(3):233-246.

29.*

Similar to Fe(III), binding of Zn(II) drastically decreases at lower degrees of inositol phosphorylation, like the IP3 and IP4 species (Persson et al. 1998). This corresponds with human studies that IP species below IP5 do not negatively affect.

Similar to observations with Zn, inositol species with lower levels of phosphorylation, such as IP3 were found to have no effect on Fe absorption when added to food (Sandberg et al. 1999).

Narratives Review

DOI: 10.1080/10408398.2020.1846014

Study: weak evidence

Zhang YY, Stockmann R, Ng K, Ajlouni S. Revisiting phytate-element interactions: implications for iron, zinc and calcium bioavailability, with emphasis on legumes. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 2022;62(6):1696-1712.

30.*

Phytinsäure und Quellen in Lebensmitteln Tabelle 1

Einweichen ist eine weit verbreitete und wichtige Methode im Keimungs- und Fermentationsprozess von Getreide. Das Einweichen von Getreide wie Perlhirse mit endogener oder exogener Phytase erhöhte die In-vitro-Löslichkeit von Eisen und Zink um 2–23 % (Lestienne et al. 2005 ). Das Einweichen von Sorghummehl für 24 Stunden bei Raumtemperatur reduzierte den Phytinsäuregehalt um 16–21 % (Mahgoub und Elhag 1998 ). Die Kombination von Einweichen und Kochen erwies sich als deutlich effektiver zur Reduzierung von Phytinsäure als das Einweichen allein über einen kurzen Zeitraum (Vidal-Valverde et al. 1994 ). Das Einweichen von Getreide und Bohnen ist sehr effektiv, um den Phytinsäuregehalt zu reduzieren und die Bioverfügbarkeit von Mineralstoffen zu erhöhen (Perlas und Gibson 2002 ; Coulibaly et al. 2011 ). Bei dieser Methode werden die Körner für eine bestimmte Zeit vollständig in Wasser eingeweicht, wodurch endogene Phytasen aktiviert werden. Durch Einweichen bei Temperaturen zwischen 45 und 65 °C und einem pH-Wert zwischen 5 und 6 wird ein beträchtlicher Anteil des Phytats hydrolysiert (Greiner und Konietzny 2006 ). Da diese Phytasen in den Körnern vorhanden sind, konnte durch deren Aktivierung der Phytinsäuregehalt signifikant reduziert werden. Diese Behandlung hat jedoch auch Nachteile, da dabei Mineralstoffe und wasserlösliche Proteine ​​verloren gehen. Mit zunehmender Einweichzeit von 2 auf 12 Stunden sank der Phytinsäuregehalt in Kichererbsen um 47,4 bis 55,71 % (Ertas und Turker 2012 ).

Eine Reduktion des Phytatgehalts um 88,3 % wurde beobachtet, als gekeimte Perlhirsesprossen mit Reinkulturen von Saccharomyces diasticus, S. cerevisiae, Lactobacillus brevis und L. fermentum 72 Stunden lang bei 30 °C fermentiert wurden (Kaur et al. 2011 ).

Keimung

Dieses Verfahren reduziert den Phytinsäuregehalt um bis zu 40 % (Masud et al. 2007 ). In ungekeimten Getreide- und Hülsenfruchtkörnern findet sich nur eine geringe endogene Aktivität, während der Keimung wurde jedoch ein deutlicher Anstieg der Phytat-abbauenden Aktivität beobachtet (Greiner und Konietzny 2006 ). Berichten zufolge reduziert das Mälzen von Hirse den Phytinsäuregehalt nach 72 Stunden um 23,9 % und nach 96 Stunden um 45,3 % (Makokha et al. 2002 ; Coulibaly et al. 2011 ). 

Mehrere Screening-Programme wurden durchgeführt, um verschiedene Gruppen von Bakterien, Hefen und Pilzen mit extrazellulärer Phytaseaktivität zu isolieren. Singh et al. ( 2013 ) isolierten phytaseproduzierende Bakterien aus verschiedenen Bodenproben und untersuchten diese mittels Phytase-Screening-Medium (PSM). Ein aus dem Boden einer Geflügelfarm isoliertes Bakterium ( Bacillus sp .) zeigt auf PSM eine 39 mm helle Zone und weist eine bessere Phytaseaktivität auf.

phytat reichert sich während der Reifungsphase rasch in Samen an. In Hülsenfrucht- und Ölsaaten wird es in globulären Kristallen innerhalb der Proteinkörper gespeichert (Erdman 1979 ). In Getreidekörnern wie Reis und Weizen findet es sich in der Kleiefraktion, beispielsweise in der Aleuronschicht und im Perikarp, in Mais im Endosperm (O'Dell et al. 1972 ). Monogastrische Tiere, einschliesslich Geflügel und Menschen, können Phytinsäure aufgrund unzureichender Aktivität phytatabbauender Enzyme in ihrem Verdauungstrakt nicht verstoffwechseln

Narratives Review

DOI: 10.1007/s13197-013-0978-y

Study: weak evidence

Gupta RK, Gangoliya SS, Singh NK. Reduction of phytic acid and enhancement of bioavailable micronutrients in food grains. Journal of Food Science and Technology. 24. April 2013;52(2):676.

31.*

Die Ergebnisse dieser Studie zeigen keinen Effekt der Intervention auf die Biomarker des Eisenstatus (Serumferritin, Serumtransferrinrezeptor und Körpereisen), da sich keiner dieser Werte nach der achtwöchigen Ernährungsumstellung signifikant veränderte. 

Diese Ergebnisse ähneln den Beobachtungen von Hunt und Roughead (15), die feststellten, dass eine zehnwöchige Ernährungsumstellung mit einer Diät mit hoher oder niedriger Bioverfügbarkeit keinen Einfluss auf die Blutwerte des Eisenstatus hatte. Basierend auf unseren früheren Studien fanden wir heraus, dass der langfristige Konsum von phytatreichem Sojaprotein die Ferritinkonzentration bei postmenopausalen Frauen mit hohem Eisenstatus senkte (28), während der Konsum von Sojaprodukten bei prämenopausalen Frauen mit niedrigem Eisenstatus keine signifikante Wirkung zeigte (13). Diese Studien legen nahe, dass die Wirkung von Phytat vom Ausgangs-Eisenstatus der Probanden abhängt. Daher gelten unsere Ergebnisse möglicherweise nur für Populationen mit suboptimalen Eisenspeichern und sind nicht auf alle Bevölkerungsgruppen übertragbar.

Randomisierte kontrollierte klinische Studie (Einzelstudie, nicht verblindet, kleine Stichprobengrösse)

DOI: 10.3945/jn.114.209957

Study: strong evidence

Armah SM, Boy E, Chen D, Candal P, Reddy MB. Regular Consumption of a High-Phytate Diet Reduces the Inhibitory Effect of Phytate on Nonheme-Iron Absorption in Women with Suboptimal Iron Stores. The Journal of Nutrition. 2015;145(8):1735–1739.

32.*

Vitamine
Die Keimung erhöht den Gehalt verschiedener Vitamine in Getreide und Hülsenfrüchten, wie beispielsweise Tocopherole (α-, β- und γ-Tocopherol), Riboflavin (Vitamin B₂ ) und Niacin (Vitamin B₃ ) (Kim et al., 2012 ), da die neuen Keimlinge diese Vitamine selbst synthetisieren (Zilic et al., 2015 ). Allerdings kommt es während der Keimung häufig zu Verlusten wasserlöslicher Vitamine. So wurde beispielsweise bei gekeimtem braunem Reis ein Verlust von Thiamin (Vitamin B₁ ) durch Auswaschung beobachtet (Moongngarm & Saetung, 2010 ). Auch der Gehalt an Pyridoxin (Vitamin B₆) und Niacin in gekeimtem braunem Reis war nur geringfügig erhöht . In einer weiteren Studie, in der Linsen und Ackerbohnen sechs Tage lang bei 20 °C keimten, zeigte sich eine Reduktion des Thiamingehalts (Prodanov, Sierra & Vidal-Valverde, 1997 ) sowie ein Anstieg des Riboflavin- und Gesamtniacingehalts. Bei verlängerter Keimungsdauer war jedoch ein Trend zu einem Anstieg des Thiamingehalts zu beobachten.

Der Vitamin-C-Gehalt (Ascorbinsäure) in gemälztem Hirse, Weizen, Mungbohnen, Kichererbsen und Weizen stieg signifikant an (Desai et al., 2010 ; Guo, Li, Tang & Liu, 2012 ; Laxmi et al., 2015 ). Vitamin C kann von Pflanzen und Tieren aus Glucose, Mannose und Galactose synthetisiert werden (Banhegyi & Mandl, 2001 ; Wheeler, Jones & Smirnoff, 1998 ). Der Anstieg des Vitamin-C-Gehalts während des Mälzens/Keimens wird daher durch die enzymatische Hydrolyse von Stärke durch Amylasen und Diastasen verursacht, wodurch mehr Glucose für die Vitamin-C-Biosynthese zur Verfügung steht.

Fermentierte Lebensmittel wie „Ogi“, hergestellt durch Säuregärung von Sorghum, Hirse oder Mais, sind in Westafrika weit verbreitet (Omemu, 2011 ), während „Chicha“ und „Masa“ gängige fermentierte Lebensmittel aus fermentiertem Mais sind, die in südamerikanischen Ländern häufig konsumiert werden (Chaves-Lopez et al., 2014 ). In Zentral- und Südafrika wird „Nshima“ aus fermentiertem Maismehl hergestellt. Obwohl diese Verfahren die Haltbarkeit, den Geschmack und die Transportfähigkeit verbessern, können sie auch negative Auswirkungen auf das Nährstoffprofil dieser Lebensmittel haben. Insgesamt scheint es, dass einige Verfahren wie Fermentation und Mälzen gleichzeitig antinutritive Faktoren reduzieren und die Nährstoffverfügbarkeit erhöhen können (Hotz & Gibson, 2007 ). Da Fermentation und Keimung häufig zur Verarbeitung von Getreide und Hülsenfrüchten eingesetzt werden, die einen grossen Teil der Ernährung von Haushalten in Entwicklungsländern ausmachen, geben wir hier einen Überblick darüber, wie diese Verfahren den Nährstoffgehalt und die Nährstoffverfügbarkeit beeinflussen.

Beispielsweise konnte durch Fermentation mit anschliessendem Kochen die Verdaulichkeit von Getreideproteinen erhöht und nahezu auf das Niveau von Fleisch gebracht werden. Dies ist wahrscheinlich nicht nur auf die Zerstörung von Protease-(Trypsin-)Inhibitoren, sondern auch auf die teilweise Vorverdauung von Getreideproteinen durch Bakterien während der Fermentation zurückzuführen. Es gibt auch eine Reduzierung von Tanninen, Oxalat, Phytinsäure und Kohlenhydraten, die mit Proteinen Komplexe bilden können und somit die Zugänglichkeit für Verdauungsenzyme einschränken.

Eine verbesserte Proteinverdaulichkeit durch Fermentation beruht auf dem teilweisen Abbau komplexer Speicherproteine ​​in besser lösliche Formen. Da die Effektivität der Fermentation von der Aktivierung der Phytase abhängt, ist es nicht verwunderlich, dass die Fermentation gerösteter oder gekochter Getreide den Phytinsäuregehalt nicht signifikant reduziert, da Rösten oder Kochen die Phytase zerstören. Darüber hinaus hängt der Grad des Phytinsäureabbaus von der Ausgangsmenge an Phytase im Getreide ab. Getreide mit geringem Phytasegehalt wie Mais, Reis, Hafer und Hirse benötigen entweder eine längere Fermentationszeit oder die Zugabe von phytasereichem Getreide, um den Phytatgehalt signifikant zu senken.

Narratives Review

DOI: 10.1002/fsn3.846

Study: weak evidence

Nkhata SG, Ayua E, Kamau EH, Shingiro J. Fermentation and germination improve nutritional value of cereals and legumes through activation of endogenous enzymes. Food Science & Nutrition. November 2018;6(8):2446–2458.

33.*

Zitronensäure gehört zu den am besten untersuchten Substanzen bei Broilern. Den Daten in Tabelle 2 zufolge weist Zitronensäure einen der niedrigsten pKa-Werte auf
unter den in der Tierernährung häufig verwendeten Säuren und besitzt mehr Carboxylgruppen
(COOH) als die anderen. Diese erste Eigenschaft bedingt ein höheres Dissoziationspotenzial
der Zitronensäure, was zu einer stärkeren pH-Wert-Senkung unter
gastrointestinalen Bedingungen führt. Die zweite Eigenschaft verleiht ihr eine überlegene Fähigkeit zur
Chelatisierung von Mineralien und anderen Komponenten, da Carboxylgruppen die Hauptbindungsstellen
für Kationen in organischen Säuren darstellen. Tatsächlich kann Zitronensäure Kationen in der Hydroxylgruppe
(OH) binden, nachdem ihr Wasserstoffatom abgespalten wurde (Milewska, 1988).Da der pKa-Wert dieser Hydroxylgruppe jedoch 11 beträgt, ein Wert, der weit über dem üblichen pH-Bereich
im Darm liegt (Huta et al., 2012), wird die Bindungseigenschaft dieser Hydroxylgruppe in der Tierernährung im Allgemeinen vernachlässigt. Zusammengenommen tragen diese Eigenschaften dazu bei, die für Zitronensäure beschriebenen überlegenen Ergebnisse beim Vergleich verschiedener organischer Säuren als Verstärker der Phytaseaktivität und der Mineralstoffverfügbarkeit in vitro zu erklären.
Eine grosse Anzahl von In-vivo-Experimenten konnte jedoch keine positiven Effekte der Kombination von Phytase und organischen Säuren bei Broilern nachweisen (Tabelle 4). Mit Ausnahme der Studie von Emami et al. (2013), in der die Phosphorverdaulichkeit ausschliesslich bei Broilern, die mit der Kombination der Zusatzstoffe gefüttert wurden, um 18,2 % anstieg, zeigten Einzelstudien keine signifikanten Wechselwirkungen oder Synergien zwischen Phytasen und organischen Säuren. Es ist anzunehmen, dass ein positiver Effekt organischer Säuren auf die Effizienz der Phytase bei der Hydrolyse von Phytinsäure in Futtermitteln mit höherem Phytatgehalt, niedrigerer Phytasekonzentration und relativ hohem Mineralstoffgehalt stärker ausgeprägt wäre.

Narratives Review

DOI: 10.1017/S0043933918000697

Study: weak evidence

Vieira BS, Caramori Junior JG, Oliveira CFS, Correa GSS. Combination of phytase and organic acid for broilers: role in mineral digestibility and phytic acid degradation. World’s Poultry Science Journal. 2018;74(4):711–726.

Hemos categorizado estudios y libros sobre nutrición y salud de acuerdo con las siguientes 3 categorías de evidencia: verde = evidencia sólida, amarillo = evidencia media, morado = evidencia débil. El resto de las fuentes están marcadas en gris. Puede encontrar una explicación detallada en nuestro artículo: ¿Ciencia o creencia? Cómo evaluar publicaciones.

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